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蛇床子素及其制劑在Caco-2 細胞模型中轉(zhuǎn)運機制的研究
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分享一篇關(guān)于植物提取物進行藥物吸收滲透方面的實驗,篇幅較長,為方便大家學(xué)習,我進行了刪減。 目的: 研究蛇床子素及其制劑在Caco-2 細胞模型中的攝取、轉(zhuǎn)運機制。方法:建立Caco-2 細胞單層模型,研究蛇床子素、蛇床子素β-環(huán)糊精包合物及其包合物分散片的攝取和跨膜轉(zhuǎn)運,考察其時間、溫度、濃度、吸收促進劑和抑制劑對藥物攝取及跨膜吸收的影響,并比較原料藥與制劑吸收過程的差異。結(jié)果:Caco-2 細胞對蛇床子素及其制劑溶液的攝取與時間、溫度、濃度均呈正相關(guān),p-糖蛋白抑制劑(CyA)與能量抑制劑(NaN3)對攝取無顯著性影響,其攝取量的大小依次為分散片>包合物>原料藥;轉(zhuǎn)運實驗中,隨濃度和溫度的增加,蛇床子素及其制劑的溶液在Caco-2 細胞中的轉(zhuǎn)運量均增加,而PAP 與PBL 比值無明顯變化,p-糖蛋白抑制劑(CyA)、能量抑制劑(NaN3)、細胞內(nèi)吞抑制劑-氧化苯砷(oxophenylarsine)及細胞旁路轉(zhuǎn)運促進劑-去氧膽酸鈉(sodium deoxycholate,SDCh)對蛇床子素的轉(zhuǎn)運無影響,而去氧膽酸鈉對包合物和分散片的轉(zhuǎn)運有明顯的影響,3 種制劑AP-BL 方向上的Papp為分散片>包合物>原料藥。結(jié)論:蛇床子素主要以被動擴散的方式被吸收,包合物和分散片中的藥物以被動轉(zhuǎn)運為主,少部分以細胞旁路轉(zhuǎn)運途徑被細胞吸收;難溶性藥物經(jīng)包合物可促進其吸收,制劑輔料對藥物的吸收有一定的促進作用。 1. Caco-2 細胞培養(yǎng) 用DMEM 培養(yǎng)液(高糖),包括10% 胎牛血清、1% 非必需氨基酸、1% L-谷氨酰胺和1% 青-鏈霉素。將Caco-2 細胞移入卡氏培養(yǎng)瓶中,并置于37 ℃ 培養(yǎng)箱中,通入5% CO2 培養(yǎng)。 2.蛇床子素儲備液的制備 精密稱取蛇床子素對照品10.0 mg 于10 mL 量瓶中,用乙醇定容,搖勻,制成1.0 mg/mL 的儲備液。 3. 蛇床子素供試液的制備 精密量取適量蛇床子素儲備夜,用PBS 溶液配制成質(zhì)量濃度分別為10,50,100,200,500 μg/mL供試液(DMSO助溶,含量<0.1%),并制備相應(yīng)藥物濃度下的蛇床子素制劑的供試液,過濾除菌,用于MTT 實驗。 4. MTT 法細胞毒性的評價 細胞毒性的測定采用噻唑藍MTT 比色法(MTTassay)。收集對數(shù)生長期Caco-2 細胞,按每孔10000 個細胞接種于96 孔板中,邊緣孔用PBS填充,孵育12~24 h,至細胞單層鋪滿孔底,吸棄培養(yǎng)液,按一定順序分別向每孔中加入“2.5”項下的Ost 儲備液各100 μL,每個濃度設(shè)5個復(fù)孔,不含藥物的孔作為陰性對照,培養(yǎng)液作調(diào)零孔。將其培養(yǎng)36~48 h 后,每孔加入5 mg/mL MTT 溶液20 μL,繼續(xù)孵育4~6 h,終止培養(yǎng),小心吸去上層液體,用PBS 溶液沖洗3 次。每孔中加入DMSO 100 μL,置搖床低速振蕩15 min,置酶聯(lián)免疫檢測儀,在630 nm 波長處測各孔的吸光值,確定藥物對Caco-2 細胞的安全濃度范圍。 5. Caco-2 細胞攝取的實驗 取Caco-2 細胞于6 孔板中培養(yǎng),每孔1.0×104個細胞,置37 ℃,5%CO2 培養(yǎng)箱中培養(yǎng)15 d。試驗前用空白pH 7.4 PBS等滲溶液,置37 ℃ 培養(yǎng)20 min,吸去緩沖溶液。用空白緩沖溶液輕輕清洗2 次,洗去細胞單分子層表面的雜質(zhì)。加入“2.5”蛇床子素供試品溶液的制備項下蛇床子素及2 種制劑溶液各2 mL,分別考察藥物濃度(20,60,100 μg/L)、時間(5,15,30 min)、溫度(4,25,37 ℃)、p-糖蛋白抑制劑CyA(50 μmol/L)、能量抑制劑NaN3(25mmol/L)對細胞攝取的影響。實驗結(jié)束后,加入空白PBS 溶液終止細胞攝取試驗,并將細胞單分子層快速清洗2 次,加入2 mL 空白PBS 液,用細胞刮取器將細胞刮入Ep 管中,超聲粉碎細胞,一部分按“細胞樣品的處理”項下方法操作后,測定藥物濃度;一部分用考馬思亮藍法測定細胞蛋白含量[14],求算細胞的攝取量ω(μg/mg),求得ω(μg/mg)=COst/CProtein。 注:式中COst 為細胞中Ost 的質(zhì)量濃度(μg/mL);CProtein為細胞懸液中細胞蛋白的質(zhì)量濃度(mg/mL)。 6. Caco-2 細胞轉(zhuǎn)運的實驗 用培養(yǎng)21 d,符合攝取條件,其細胞生長形態(tài)完好的Millicell 膜,試驗前用空白pH 7.4 PBS 等滲溶液,置37 ℃ 下培養(yǎng)20 min,清洗2 次,洗去細胞單分子層表面的雜質(zhì)?疾霢P 側(cè)BL 側(cè)的轉(zhuǎn)運,在AP 側(cè)加入藥物溶液0.5 mL 作為供給液,在BL 側(cè)加入1.5mL 空白PBS 液作為接收液。對于從BL 側(cè)到AP 側(cè)轉(zhuǎn)運:將1.5 mL 藥物溶液加到BL 側(cè)作為供給液,0.5 mL 空白pH7.4 PBS 液加到AP 側(cè)作為接收液;待分別在5,15,30,60,120 min 時吸取100 μL 接收液,測定藥物濃度,計算表觀透過系數(shù)(Papp),求得Papp=1.0×10-6 cm/s;同時補加等量37 ℃ 空白PBS液以及考察濃度(20,60,100 μg/mL)、溫度(4,25,37 ℃)、p-糖蛋白抑制劑(CyA,50μmol/L)、能量抑制劑(NaN3)(25 mmol/L)、細胞內(nèi)吞抑制劑-氧化苯砷(oxophenylarsine)(25 mmol/L)及細胞旁路轉(zhuǎn)運促進劑- 去氧膽酸鈉(sodium deoxycholate,SDCh)(100mmol/L)對藥物轉(zhuǎn)運的影響。按下列公式計算:表觀透過系數(shù)Papp=(dQ/dt)/(A×C0)。 注:式中dQ/dt 為接受端受試藥物出現(xiàn)的速率(μg/min);A 指聚碳酯膜表面積(≈1.1cm2),C0是藥物在供體室的初始濃度)表觀滲透率PDR=Papp(B → A)/Papp(A → B)注:Papp(B→ A)為基底側(cè)BL到腸腔側(cè)AP的表觀透過系數(shù);Papp(A→ B)為腸腔側(cè)AP到基底側(cè)BL的表觀透過系數(shù)。 詳細信息可以查看原文獻哈《蛇床子素及其制劑在Caco-2 細胞模型中轉(zhuǎn)運機制的研究》。 |
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