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乙酰輔酶A(Acetyl-CoA)含量檢測試劑盒實驗解決方案
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原理 乙酰輔酶A(Acetyl-CoA)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中。是生物體能源物質(zhì)代謝過程中產(chǎn)生的一種重要的中間代謝產(chǎn)物。在體內(nèi)能源物質(zhì)代謝中是一個樞紐性的物質(zhì)。糖、脂肪、蛋白質(zhì)三大營養(yǎng)物質(zhì)通過乙酰輔酶A匯聚成一條共同的代謝通路--三羧酸循環(huán)和氧化磷酸化,經(jīng)過這條通路徹底氧化生成二氧化碳和水,釋放能量用于ATP合成。此外,乙酰輔酶A是合成脂肪酸,酮體,膽固醇及其衍生物等生理活性物質(zhì)的前體物質(zhì)。CheKine™ 乙酰輔酶A(Acetyl-CoA)含量檢測試劑盒(微量法)提供了一種簡單、靈敏、快速的乙酰輔酶A檢測方法,適合多種類型的樣本,如動/植物組織、細胞等樣本。其檢測原理是蘋果酸脫氫酶可催化蘋果酸和NAD生成草酰乙酸和NADH。檸檬酸合酶可催化乙酰輔酶A和草酰乙酸生成檸檬酸和輔酶A。利用蘋果酸脫氫酶和檸檬酸合酶的偶聯(lián)反應,乙酰輔酶A含量和NADH的生成速率成正比,NADH在340 nm處有特征吸收峰,通過檢測340 nm吸光值的計算既可得到乙酰輔酶A含量。 自備耗材 ·酶標儀或紫外分光光度計(能測340 nm處的吸光度) ·制冰機,低溫離心機 ·水浴鍋 ·96孔UV板或微量石英比色皿 ·可調(diào)節(jié)式移液槍及槍頭 ·去離子水 ·勻漿器(如果是組織樣本) 試劑準備 Extraction Buffer:即用型;使用前,平衡到室溫;4℃保存。 注意:Extraction Buffer有刺激性氣味,建議在通風櫥進行實驗。 Working ReagentⅠ:臨用前配制,對于48 T,加入175 μL ReagentⅣ充分溶解備用;對于96 T,加入350 μL ReagentⅣ充分溶解備用,未用完的試劑-20℃避光分裝保存2周。 Working ReagentⅡ:臨用前配制,對于48 T,加入175 μL ReagentⅣ充分混勻備用;對于96 T,加入350 μL ReagentⅣ充分溶解備用,未用完的試劑4℃避光分裝保存2周。 Working ReagentⅢ:臨用前配制,對于48 T,加入15.75 mL ReagentⅣ充分溶解備用;對于96 T,加入31.5 mL ReagentⅣ充分溶解備用,未用完的試劑-20℃避光分裝保存2周。 工作液:臨用前配制,將Working ReagentI、Working ReagentⅡ和Working ReagentⅢ按照1:1:90的比例混合,現(xiàn)用現(xiàn)配。 Standard (NADH):臨用前配制,對于48 T,加入0.5 mL去離子水充分溶解備用;對于96 T,加入1 mL去離子水充分溶解備用,得8,000 nmol/mL標準品,未用完的試劑-20℃避光分裝保存2周。 標準曲線設(shè)置:按照如下表格,用去離子水將8,000 nmol/mL標準品稀釋為3,200、1,600、800、400、200、100、50、0 nmol/mL的標準溶液。 序號 標準液體積 去離子水體積(µL) 濃度(nmol/mL) Std.1 100 µL 8,000 nmol/mL 150 3,200 Std.2 100 µL of Std.1 (3,200 nmol/mL) 100 1,600 Std.3 100 µL of Std.2 (1,600 nmol/mL) 100 800 Std.4 100 µL of Std.3 (800 nmol/mL) 100 400 Std.5 100 µL of Std.4 (400 nmol/mL) 100 200 Std.6 100 µL of Std.5 (200 nmol/mL) 100 100 Std.7 100 µL of Std.6 (100 nmol/mL) 100 50 Std.8 0 200 0 注意:每次實驗都要做一次標準品檢測,制作標曲;稀釋后的標準品溶液不穩(wěn)定,必須在4小時內(nèi)使用。Std.8即空白孔。 樣本制備 注意:推薦使用新鮮樣本,如果不立即進行實驗,樣本可在-80℃保存1個月。 1.細胞樣本:收集細胞樣本到離心管內(nèi),棄上清,按照每500萬細胞加入1 mL Extraction Buffer,超聲破碎細胞(功率20%,超聲3 s,間隔10 s,重復30次),13,000 g,4℃離心10 min,取上清,置冰上待測。 2.組織樣本:稱取0.1 g組織,加入1 mL Extraction Buffer,進行冰浴勻漿,13,000 g,4℃離心10 min,取上清,置冰上待測。 注意:如需測定蛋白濃度,推薦使用Abbkine貨號:KTD3002的蛋白質(zhì)定量試劑盒(Bradford法)進行樣本蛋白質(zhì)濃度測定。 實驗步驟 1.酶標儀或紫外分光光度計預熱30 min以上,調(diào)節(jié)波長到340 nm,紫外分光光度計用去離子水調(diào)零。 2.工作液于37℃(哺乳動物)或25℃(其它物種)孵育10 min。 3.操作表:在96孔UV板或微量石英比色皿中,按照下表進行實驗 試劑 測定孔(μL) 標準孔(μL) 樣本 25 0 不同濃度的Std. 0 25 工作液 230 230 4.混勻,測定孔立即讀取340 nm處20秒的吸光值A(chǔ)1和1分20秒時的吸光值A(chǔ)2,計算ΔA測定=A2-A1,標準孔讀取340 nm處1分20秒時的吸光值A(chǔ)標準,ΔA標準=A標準-A空白。 注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果吸光度大于1.5,可以減少樣本量,如果吸光度太低,可以減少Extraction Buffer體積。 結(jié)果計算 注意:我們?yōu)槟峁┑挠嬎愎,包括推導過程計算公式和簡潔計算公式。兩者完全相等。建議以加粗的簡潔計算公式為最終計算公式。 以ΔA標準為x軸,標準品濃度為y軸,制作標準曲線,得到方程,將ΔA測定帶入方程,得到y(tǒng)值。 1. 按樣本蛋白濃度計算: 乙酰輔酶A含量(nmol/mg prot)=(y×V樣)÷(V樣×Cpr)=y÷Cpr 2. 按樣本鮮重計算: 乙酰輔酶A含量(nmol/g 鮮重)=(y×V樣)÷(W×V樣÷V提取)=y÷W 3. 按細胞密度計算: 乙酰輔酶A含量(nmol/104 cells)=(y×V樣)÷(500×V樣÷V提取)=y÷500 V樣:加入樣本體積,0.025 mL;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣品質(zhì)量,g;V提。杭尤胩崛∫后w積,1 mL;500:細胞總數(shù),500萬。 結(jié)果展示 參考標曲如下: Figure 1. NADH的標準曲線 |
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