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YX科研小助理新蟲 (小有名氣)
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[交流]
熒光素酶表達(dá)的淋巴瘤NCG小鼠模型的構(gòu)建
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淋巴瘤是發(fā)生在淋巴結(jié)及或淋巴結(jié)外淋巴組織的惡性腫瘤,可分為霍奇金病和非霍奇金淋巴瘤,在青壯年中發(fā)病率比較高。據(jù)世界衛(wèi)生組織統(tǒng)計,目前全球每年約有35萬新發(fā)淋巴瘤患者,死亡患者人數(shù)超過20萬。我國淋巴瘤發(fā)病率為0.02‰,每年新增患者約2.5萬人,死亡2萬人。淋巴瘤已經(jīng)嚴(yán)重威脅人類健康,建立合適的動物模型是研制抗腫瘤藥和了解血液腫瘤發(fā)展的重要手段。 動物的選擇NCG免疫缺陷小鼠為人源化小鼠模型,此品系缺失成熟的T細(xì)胞、B細(xì)胞和NK細(xì)胞,可以用來移植人類造血干細(xì)胞、腫瘤細(xì)胞。選用NOD-Prkdcem26Cd52(上標(biāo))Il2rgem26Cd22(上標(biāo))/Nju(NCG)免疫缺陷小鼠。造模方法1表達(dá)熒光素酶慢病毒質(zhì)粒的構(gòu)建以慢病毒質(zhì)粒lentiCRISPRv2作為骨架載體,lentiCRISPRv2質(zhì)粒原表達(dá)框架為cas9及共表達(dá)的嘌呤霉素,將表達(dá)cas9的序列通過分子生物學(xué)手段替換成表達(dá)熒光素酶的基因序列,即可得到熒光素酶與嘌呤霉素共表達(dá)的病毒包裝質(zhì)粒。對lentiCRISPRv2進行XbaⅠ和BamHⅠ雙酶切去除cas9表達(dá)框,酶切產(chǎn)物進行1%瓊脂糖膠跑膠回收10000bp處條帶,利用Addgene設(shè)計引物lentiCRISPRv2-luc+-F(5’-GAACACAGGACCGGTTCTAGAGCGCTGCCACCATGGAAGACGCCAAAAAC-3’)和引物lentiCRISPRv2-luc+-R(5’-GAAGTTTGTTGCGCCGGATCCACACGGCGATCTTTCCGC-3’),以PLG-3 basic為模板,采用 PhantaMaxmastermixPCR擴增熒光素酶基因片段。ONEstepCloneKit(Vazyme)將lentiCRISPRv2膠回收產(chǎn)物和 PCR產(chǎn)物進行連接。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入E.coli DH5α大腸桿菌感受態(tài),帶氨芐青霉素的Luria-Bertani(LB)平板上篩選轉(zhuǎn)化子,用引物lentiCRISPRv2-luc+-F 和lentiCRISPRv2luc+-R對轉(zhuǎn)化子進一步篩選,并通過測序進一步驗證,通過Snapgene進行序列比對,陽性克隆命名為lentiCRISPRv2-luc+。2慢病毒的包被、濃縮HEK293T細(xì)胞常規(guī)培養(yǎng)于高糖DMEM培養(yǎng)基中,于37℃恒溫,5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。選擇生長狀態(tài)良好的HEK293T細(xì)胞,于10cm培養(yǎng)皿接種約4×1000000胞,12~16h后達(dá)到70%~80%融合率。在一個無菌的5mL試管中,加入無血清Opti-DMEM培養(yǎng)基1.5mL,依次加入12.5μg的lentiCRISPRv2-luc+、10μgVSVG和7.5μgΔ8.91 3種質(zhì)粒,輕輕混勻。在另一個無菌的5mL試管中,將60μL聚乙烯亞胺(PEI)(1ng/μL)稀釋于1.5mL無血清Opti-DMEM培養(yǎng)基中,輕輕混勻,室溫放置5min。將稀釋好的PEI緩慢加入混勻的質(zhì)粒中,混勻,室溫孵育20min,形成DNA-脂質(zhì)體復(fù)合物,逐滴加入培養(yǎng)皿中,8h后換成完全培養(yǎng)基。收集轉(zhuǎn)染后48h和72h的病清,4℃,4000r/min離心30min去除細(xì)胞碎片,并用0.45μm濾膜過濾,進一步去除細(xì)胞碎片;4℃條下,25000r/min超速離心2h,保留沉淀,利用RPMI1640培養(yǎng)基溶解沉淀即為濃縮病毒,將病毒分裝,立即使用或凍存于-80℃?zhèn)溆谩?慢病毒滴度的測定實時熒光定量PCR(RealtimeQuantitativePCR,qPCR)法測定慢病毒的滴度,以lenti-luc+大抽質(zhì)粒為標(biāo)準(zhǔn)品,測定標(biāo)準(zhǔn)曲線:利用阿佛加德羅定律推論,將lentiCRISPRv2-luc+逐級稀釋成1010,109,108,107,106,105,104,103,100,10,0個拷貝等梯度濃度,每個梯度重復(fù)3次,設(shè)計引物:WPRE-F(5’-GGCACTGACAATTCCGTGGT-3’)和 WPRE-R(5’-AGGGACGTAGCAGAAGGACG-3’),以逐級稀釋好的質(zhì)粒為模板,qPCR測定拷貝數(shù)和Ct值之間的相關(guān)性,并擬合成直線。吸取混勻的病毒,抽提病毒RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA,以 WPRE-F和 WPRE-R為qPCR引物,測定Ct值,利用已經(jīng)得到的標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算出病毒拷貝數(shù)。由于病毒顆粒與病毒拷貝數(shù)一一對應(yīng),即可計算出病毒的滴度。4嘌呤霉素最佳篩選濃度的確定取對數(shù)生長期Raji細(xì)胞,按每孔5×105個接種于6孔板中,置于37℃,5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。嘌呤霉素按0,0.5,1,1.5,2,3μg/mL設(shè)置6個濃度梯度。在細(xì)胞接種24h后,將配制好的嘌呤霉素加入96孔板中,每個濃度設(shè)置3個重復(fù)孔,每天觀察細(xì)胞生長情況,在48h內(nèi)全部死亡的最低嘌呤霉素濃度,即為篩選表達(dá)熒光素酶的Raji克隆細(xì)胞的濃度。5慢病毒對Raji細(xì)胞的感染,陽性細(xì)胞的篩選及擴增取對數(shù)生長期的Raji細(xì)胞5×105接種于6孔板中培養(yǎng)24 h,加入濃縮后的病毒,以感染復(fù)數(shù)(MultiplicityOfInfection,MOI)=5感染Raji細(xì)胞,并加入終濃度為8μg/mL的polybrene,加入1mLRPMI1640完全培養(yǎng)基,37℃,5% CO2培養(yǎng)箱中靜置感染24h后換成含10%胎牛血清的 RPMI1640新鮮完全培養(yǎng)基。繼續(xù)培養(yǎng)24~48h,培養(yǎng)基變黃時,更換新鮮培養(yǎng)基。向慢病毒感染后72h的Raji細(xì)胞中加入合適濃度的嘌呤霉素,每兩天更換一次培養(yǎng)基并維持嘌呤霉篩選直至得到陽性混合細(xì)胞。取1×10000個細(xì)胞加入熒光素酶底物,初步鑒定熒光素酶的表達(dá);將嘌呤霉素篩選濃度提升到3倍,篩選熒光素酶高表達(dá)陽性克隆細(xì)胞,命名為Raji-luc+。6熒光素酶活性鑒定將Raji-luc+細(xì)胞傳代5~10次,收集一定量細(xì)胞,按梯度稀釋于96孔板中,每孔 Raji-luc+細(xì)胞數(shù)分別為2×104,1×104,5000,2500,1250,625,312,0個,用熒光素酶底物(Promega),酶標(biāo)儀檢測細(xì)胞發(fā)光情況,檢測細(xì)胞發(fā)光強度和細(xì)胞數(shù)之間的相關(guān)性;進一步使用活體成像對每孔Raji-luc+細(xì)胞數(shù)分別為4×104,2×104,1×104,5000,2500,1250,625個及4×104個Raji細(xì)胞的96孔板成像。7NCG小鼠血液腫瘤模型的建立隨機將4~5周,體重15~20g,5只雌性NCG小鼠分成兩組,空白對照(mock)組小鼠,實驗組小鼠(n=4)每只尾靜脈注射 Raji-luc+細(xì)胞1×106個。實驗組取對數(shù)生長期的Raji細(xì)胞,用PBS重懸細(xì)胞密度為1×107/mL,實驗組每只小鼠尾靜脈注射100μL;mock組尾靜脈注射100μLPBS,接種后第0d,9d,12d,15d,活體成像儀檢測腫瘤成瘤情況。檢測前使用戊巴比妥鈉麻醉小鼠(計量為35mg/kg),嚴(yán)格按照Promega說明書注射底物,10min內(nèi),進行活體成像分析腫瘤生長情況,并繪制小鼠體重變化曲線。結(jié)果01lentiCRISPRv2-luc+質(zhì)粒的構(gòu)建以lentiCRISPRv2-luc+為載體骨架,將熒光素酶表達(dá)基因插入其中,轉(zhuǎn)入E.coli DH5α大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞,獲得陽性轉(zhuǎn)化子。熒光素酶通過P2A與嘌呤霉素基因相連,EF1-α啟動熒光素酶和嘌呤霉素的共表達(dá)。02慢病毒滴度的測定以lentiCRISPRv2-luc+質(zhì)粒為標(biāo)準(zhǔn)品,稀釋成每孔1×107,1×106,1×105,1×104,1×103,1×102,10,0個拷貝梯度濃度,每個梯度濃度重復(fù)3個孔,QPCR測定拷貝數(shù)對應(yīng)的Ct值,分析拷貝數(shù)和Ct值成對數(shù)相關(guān)性,R2=0.9985,擬合成方程為:y=-1.535ln(x)+35.453,y代表Ct值,x代表拷貝數(shù)。抽取病毒總RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA,以cDNA為模板,重復(fù)3個孔,測得 Ct為26.78,計算拷貝數(shù)為211,稀釋倍數(shù)為1×105,計算出病毒滴度為2×107/mL。03Raji陽性細(xì)胞的篩選和穩(wěn)定表達(dá)熒光素酶的Raji細(xì)胞系的鑒定經(jīng)嘌呤霉素梯度濃度篩選,確定篩選Raji細(xì)胞的最佳嘌呤霉素篩選濃度為2μg/mL,慢病毒感染Raji細(xì)胞后經(jīng)2μg/mL的嘌呤霉素篩選1周后,細(xì)胞不再死亡,開始正常生長;將嘌呤霉素濃度提升至6μg/mL,篩選出高表達(dá)熒光素酶的Raji細(xì)胞混合克隆,在含6μg/mL的RPMI1640完全培養(yǎng)基中繼續(xù)擴大培養(yǎng)并傳代,至第5代時利用熒光素酶活性檢測。嘌呤霉素的篩選濃度從2μg/mL提升至6μg/mL,Raji細(xì)胞熒光素酶表達(dá)量提升約2倍,Raji-luc+細(xì)胞系熒光素酶的高表達(dá)有利于在小鼠體內(nèi)靈敏的追蹤腫瘤形成或消除。在96孔板中,用RPMI1640培養(yǎng)基將Raji-luc+細(xì)胞進行倍比稀釋,從10000/孔到160/孔,用培養(yǎng)基作為陰性對照(mock),加入熒光素酶底物,酶標(biāo)儀檢測和收集數(shù)據(jù),發(fā)光強度與細(xì)胞數(shù)量成正比,可以依據(jù)發(fā)光強度的大小來判斷腫瘤細(xì)胞的多少。取相同梯度稀釋的細(xì)胞加入熒光素酶底物,最后一個孔為RPMI1640培養(yǎng)基,作為陰性對照。體外活體成像儀顯示,Raji-luc+細(xì)胞具有良好的成像功能,當(dāng)細(xì)胞數(shù)只有625個時,依然能檢測到信號值,且從圖像顯示的亮度可以看出發(fā)光強度與細(xì)胞數(shù)成正比。(活體成像技術(shù)是一種高靈敏度而直觀的影像技術(shù),能夠準(zhǔn)確地觀察經(jīng)熒光素酶標(biāo)記的細(xì)胞體內(nèi)定位、增殖及轉(zhuǎn)移情況。其優(yōu)勢在于:熒光素酶標(biāo)記的腫瘤細(xì)胞在小鼠體內(nèi)成瘤后,利用靈敏的活體成像系統(tǒng),檢測熒光素的發(fā)光強度,可間接反映出小鼠體內(nèi)腫瘤細(xì)胞的數(shù)量、大小和轉(zhuǎn)移情況。因此活體成像技術(shù)是篩選抗腫瘤藥物和評價抗腫瘤藥物有效性的新興手段。) 活體成像儀04穩(wěn)定表達(dá)熒光素酶的Raji細(xì)胞系生長特性細(xì)胞計數(shù)觀察Raji-luc+細(xì)胞和母細(xì)胞Raji細(xì)胞的生長情況。Raji-luc+細(xì)胞和Raji細(xì)胞具有相似的生長趨勢,表明Raji-luc+細(xì)胞熒光素酶的過表達(dá)并未影響細(xì)胞生長周期。分別取1×104第5,6,7,8,9,10代的Raji-luc+細(xì)胞,加入熒光素酶底物,發(fā)光強度隨著代數(shù)的增加,保持穩(wěn)定,熒光素酶基因能在細(xì)胞生長分裂過程中穩(wěn)定表達(dá)。05淋巴瘤NCG小鼠模型的建立NCG小鼠尾靜脈注射Raji-luc+細(xì)胞,移植后9d,所有實驗組均可觀察到腫瘤發(fā)光,mock組未觀察到發(fā)光,隨著時間增加,移植后12d,實驗組發(fā)光強度明顯增強,第14天,腫瘤負(fù)荷小鼠開始死亡,小鼠全身腫瘤擴散,觀察小鼠腫瘤分布,發(fā)現(xiàn)小鼠頭部和淋巴處腫瘤集中。NCG小鼠腫瘤模型建立過程中,尾靜脈注射Raji-luc+細(xì)胞后7d之內(nèi),小鼠體重呈小幅增長的趨勢,但隨著腫瘤負(fù)荷的增大,小鼠體重快速下降,直至死亡。 |

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