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一文帶你了解4種常見的蛋白質(zhì)互作技術(shù)
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作為生命活動的主要承擔者,蛋白質(zhì)的功能一直是科研活動中備受關(guān)注的明星。蛋白質(zhì)通常不是“單打獨斗”的,絕大多數(shù)的功能蛋白質(zhì)會與其他蛋白質(zhì)相互作用,一起調(diào)控生命過程。那么,研究蛋白質(zhì)互作的技術(shù),你了解多少呢? 一、免疫共沉淀 免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,COIP)技術(shù)是利用抗原抗體之間具有特異的免疫結(jié)合的原理,在細胞裂解液中加入特異性抗體,將抗原及與抗原結(jié)合的蛋白沉淀下來。免疫復合物可以通過Western Blot的方法驗證抗原和其他蛋白之間的相互作用,也可以用質(zhì)譜的方法,檢測抗原的結(jié)合蛋白成員。 免疫共沉淀 COIP技術(shù)的優(yōu)缺點: 優(yōu)點: (1)得到的互作蛋白是細胞內(nèi)與誘餌蛋白天然互作的,符合體內(nèi)真實生理情況; (2)實驗條件溫和,可避免人為的影響;(3)可分離得到天然狀態(tài)的相互作用蛋白復合物。 缺點: (1)不適用于結(jié)合力弱或者瞬間結(jié)合的蛋白互作研究。 二、Pull Down Pull-down技術(shù)用固相化的、已標記的餌蛋白或標簽蛋白(生物素-、PolyHis-或GST-),從細胞裂解液中釣出與之相互作用的蛋白。通過Pull-down技術(shù)可以確定已知的蛋白與釣出蛋白或已純化的相關(guān)蛋白間的相互作用關(guān)系,從體外傳路或翻譯體系中檢測出蛋白相互作用關(guān)系。COIP檢測到的蛋白互作關(guān)系可能是第三個蛋白作為橋梁建立的,與之相比,pull down技術(shù)可用于檢測蛋白之間的直接互作關(guān)系。但pull down需要先把誘餌蛋白原核表達純化出來,再與目的蛋白溶液孵育,其無法像COIP一樣模擬細胞內(nèi)天然的互作環(huán)境。 Pull-down技術(shù) 三、雙分子熒光互補 雙分子熒光互補技術(shù)是指熒光蛋白多肽鏈在某些不保守的氨基酸處切開,形成不發(fā)熒光的N-和C-末端2個多肽片段。將這2個熒光蛋白片段分別連接到1對能發(fā)生相互作用的目標蛋白上,在細胞內(nèi)共表達或體外混合這2個融合蛋白時,由于目標蛋白質(zhì)的相互作用,熒光蛋白的2個片段在空間上互相靠近互補,重新構(gòu)建成完整的具有活性的熒光蛋白分子,從而產(chǎn)生熒光?梢暬 BiFC 技術(shù)最大的特點。 雙分子熒光互補 四、酵母雙雜交 酵母雙雜交系統(tǒng)是當前廣泛用于蛋白質(zhì)相互作用組學研究的一種重要方法。其原理是當靶蛋白和誘餌蛋白特異結(jié)合后,誘餌蛋白結(jié)合于報道基因的啟動子,啟動報道基因在酵母細胞內(nèi)的表達,如果檢測到報道基因的表達產(chǎn)物,則說明兩者之間有相互作用,反之則兩者之間沒有相互作用。在實際工作中,人們根據(jù)需要發(fā)展了單雜交系統(tǒng)、三雜交系統(tǒng)和反向雜交系統(tǒng)等。 蛋白質(zhì)互作 (2).jpg 除此之外,研究蛋白質(zhì)互作的方法還有噬茵體展示技術(shù)、等離子共振技術(shù)、抗體與蛋白質(zhì)陣列技術(shù)等。選擇合適的實驗方案會讓您的實驗過程事半功倍,MDL,專業(yè)的技術(shù)平臺為您的實驗助力。 |
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