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活性氧ROS的流式檢測
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活性氧ROS的流式檢測 活性氧（ROS）的流式檢測通常是通過使用熒光探針如DCFH-DA來監(jiān)測細胞內(nèi)活性氧水平的變化。以下是該檢測方法的一些關(guān)鍵步驟和原理： 01 選擇熒光探針 常用的熒光染料是DCFH-DA，它能夠進入細胞并在細胞內(nèi)被酯酶水解成DCFH。DCFH隨后可以被細胞內(nèi)的活性氧氧化，生成發(fā)熒光的DCF。 02 DCFH-DA 是一種用于檢測活性氧ROS的熒光探針，全稱為2,7-二氯熒光素二乙酸酯。其工作原理為：DCFH-DA本身沒有熒光，但可以自由穿過細胞膜，一旦進入細胞，它會被細胞內(nèi)的酯酶水解成DCFH，由于DCFH無法穿過細胞膜，因此熒光探針會在細胞內(nèi)積聚。細胞內(nèi)的ROS能夠氧化無熒光的DCFH，生成有熒光的DCF，且熒光強度與ROS水平成正比。通過熒光顯微鏡、流式細胞儀或激光共聚焦顯微鏡等設(shè)備，在最大激發(fā)波長480nm和最大發(fā)射波長525nm下檢測熒光信號。 03 步驟 裝載探針 對于刺激時間較短(通常為2小時以內(nèi))的細胞，先裝載探針，后用活性氧陽性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞。對于細胞刺激時間較長(通常為6小時以上)的細胞，先用活性氧陽性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞，后裝載探針。 原位裝載探針：本方法僅適用于貼壁培養(yǎng)細胞。按照1:1000用無血清培養(yǎng)液稀釋DCFH-DA，使終濃度為10微摩爾/升。去除細胞培養(yǎng)液，加入適當(dāng)體積稀釋好的DCFH-DA。加入的體積以能充分蓋住細胞為宜，通常對于六孔板的一個孔加入稀釋好的DCFH-DA不少于1毫升。37℃細胞培養(yǎng)箱內(nèi)孵育20分鐘。用無血清細胞培養(yǎng)液洗滌細胞三次，以充分去除未進入細胞內(nèi)的DCFH-DA。通�；钚匝蹶栃詫φ赵诖碳ぜ毎�20-30分鐘后可以顯著提高活性氧水平。 收集細胞后裝載探針：按照1:1000用無血清培養(yǎng)液稀釋DCFH-DA，使終濃度為10微摩爾/升。細胞收集后懸浮于稀釋好的DCFH-DA中，細胞濃度為一百萬至二千萬/毫升，37℃細胞培養(yǎng)箱內(nèi)孵育20分鐘。每隔3-5分鐘顛倒混勻一下，使探針和細胞充分接觸。用無血清細胞培養(yǎng)液洗滌細胞三次，以充分去除未進入細胞內(nèi)的DCFH-DA。直接用活性氧陽性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞，或把細胞等分成若干份后刺激細胞。通常活性氧陽性對照在刺激細胞20-30分鐘后可以顯著提高活性氧水平。 說明：僅在陽性對照孔中加入Rosup作為陽性對照，其余孔不必加入Rosup。 檢測 對于原位裝載探針的樣品可以用激光共聚焦顯微鏡直接觀察，或收集細胞后用熒光分光光度計、熒光酶標儀或流式細胞儀檢測。對于收集細胞后裝載探針的樣品可以用熒光分光光度計、熒光酶標儀或流式細胞儀檢測，用激光共聚焦顯微鏡直接觀察也可以。 參數(shù)設(shè)置 使用488nm激發(fā)波長，525nm發(fā)射波長，實時或逐時間點檢測刺激前后熒光的強弱。DCF的熒光光譜和FITC非常相似，可以用FITC的參數(shù)設(shè)置檢測DCF。 04 流式方法檢測需客戶提供的資料 1.實驗細胞 2.刺激藥物 實驗流程 細胞培養(yǎng)——加藥刺激——細胞標記——流式上機檢測——結(jié)果分析 結(jié)果 1.流式原始數(shù)據(jù) 2.數(shù)據(jù)分析結(jié)果 3.實驗報告，包括儀器，試劑及實驗步驟 |
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