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[交流]
聊聊|關于RAPID技術中引物探針的設計和那些BUG
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上一期我們介紹了什么是RAPID,RAPID的原理、技術特點以及應用范圍,今天再來聊聊RAPID引物探針的設計原則要點以及其中可能會遇到哪些BUG? 做分子檢測的朋友們對PCR技術應該都是非常熟悉了,在PCR中,引物的設計都已經有一套成型的protocol,按照這個protocol來進行引物設計,一般都能得到想要的結果。即使結果與預期有差距,通過改變反應條件,如更改退火溫度,調整延伸時間等,都可以在不改變引物的條件下,達到預期目的。因此,做PCR的小伙伴們,都可以根據文獻中報道的引物,很輕松的就能按照文獻中的protocol,達到想要的結果。 那么RAPID的引物、探針設計原則及要點有哪些: 設計原則 1.引物長度一般在30-35nt之間,可以大于35nt,不要小于30nt; 2.擴增子最好不超過500bp,一般在100-300bp之間; 3.如要進行探針檢測,設計時須注意為探針留出足夠的序列空間,探針長度不低于45nt; 4.探針修飾不是中間插入dSPacer,而是將一個堿基替換為dSPacer; 5.一般在設計引物探針時,盡量避免重復序列,一般不要超過3個; 6.先設計探針,再設計引物,更符合經濟效益原則。 設計要點 1.5’端(3-5nt)序列應避免出現重復的G; 2.3’端(后3nt)序列最好有G或C; 3.GC含量在40-60%之間; 4.TM值對引物影響不是太大,不是關鍵因素 ; 5.避免引物內、引物間出現結構。 另外, PCR 引物可以用于 RAPID,具有 PCR常用長度(例如18-23bp)的引物可用于RAPID反應。不過反應可能會稍慢,如果想要快速擴增,還是建議使用稍微長一些的引物。 而大部分利用聚合酶的 5'-3'核酸酶活性的PCR探針不能用于 RAPID。 有些小伙伴會發(fā)現,在PCR中運行很好的策略,在做重組酶聚合酶擴增(RPA)/RAPID的實驗中不管用,或者說是效果差,這到底是怎么回事呢? 除了上面說的原則以外,還需要注意以下幾點: 01 在PCR實驗中,控制反應條件的因素,主要是溫度因素,通過優(yōu)化不同反應階段的溫度,來達到實驗預期目的。而在RPA/RAPID實驗中,反應溫度(一般為37℃)是固定的,反應體系一般也是整合好的,唯一能改變的條件就是引物。 02 雖然目前PCR儀器廠家很多,但對于溫度這一物理因素,都是可以做到統(tǒng)一控制的,因此,即使使用不同的PCR儀器,設置相同的條件,都是可以達到相同的效果。目前生產重組酶聚合酶擴增試劑盒的廠家目前也有很多,但由于重組酶聚合酶擴增試劑盒是由多個酶參與的復合酶體系,其相對復雜,而這些體系的配比都屬于各個廠家的核心機密,因此不同廠家之間無法做到統(tǒng)一。 因此, 如果用做PCR的思維方式來做RPA / RAPID,就會發(fā)現,在設計了一對引物后,往往達不到預期效果。 于是,有的小伙伴為了快速出成果,就想到一種“捷徑”,購買市面上多個廠商的重組酶聚合酶擴增試劑盒,通過使用固定引物來測試不同廠家的試劑效率。這樣會導致這樣一種后果,不同的項目,不同的重組酶聚合酶擴增試劑盒效果也不一樣,在實際操作中很容易用混亂,不利于管理工作。 這種通過固定引物,來篩選重組酶聚合酶擴增體系的方法,看似是“捷徑”,實際上要購買大量不同廠商試劑,每個項目都需要進行各種比較,浪費了大量的物力財力,是不劃算的。 那么應該怎么做呢? 首先在RPA / RAPID體系中,進行引物篩選,進行引物篩選,進行引物篩選,重要的事情說三遍。 將反應體系固定,設計不同的引物對,通過對引物的篩選,得到達到預期的引物,這樣看似復雜,實際上是最快捷的方式。一般在篩選9對引物,基本上都能得到達到預期效果的引物組合,這個篩選過程,一般一天就能完成。 這樣就導致另一個問題: 有些小伙伴使用某一個廠家生產的重組酶聚合酶擴增試劑盒,篩選出一對較好引物。在靈敏度、特異性等方面的評價均較高,但基于多方面綜合考慮,仍然想使用樂尚的RAPID試劑,可不想再篩選引物,那又該怎么辦呢? 別著急,如果之前使用樂尚生物的RAPID試劑盒篩選出引物的小伙伴,樂尚生物將為您繼續(xù)提供高質量穩(wěn)定的RAPID試劑盒;如果是使用其他廠商試劑盒篩選出來的引物,樂尚將會提供特殊定制的不同反應體系,來達到您之前同樣的實驗效果。 |
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