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xuyuzhi

新蟲 (正式寫手)


[交流] 史上最全點(diǎn)突變實(shí)操

https://mp.weixin.qq.com/s?__biz=MzU3MzkwMDkzNw==&mid=2247483670&idx=1&sn=0c41f53854060efa0161dca05a6f55bb&chksm=fd3bd0f0ca4c59e6dfec34fe31a776cf775f3959ab29e58ab5b6f503b8bad82d2783d7889e91&token=73890196&lang=zh_CN#rd

也許大概7年前,當(dāng)導(dǎo)師告訴我要對(duì)我所研究的Xxoa蛋白做一些定點(diǎn)突變時(shí),我的內(nèi)心是拒(bu)絕(gan)的:第一次進(jìn)行這種大實(shí)驗(yàn),你不能讓我做,我就馬上開始做。第一我要研究一下原理,方法啊,因?yàn)槲也辉敢馐裁炊疾欢烷_始一頓忙操作,到頭來結(jié)果很壞,師兄師姐一定會(huì)覺得我很蠢,研究生剛進(jìn)實(shí)驗(yàn)室,第一次還是要給他們眼前一亮的感覺!其次呢,做實(shí)驗(yàn)前總要準(zhǔn)備試劑,還有各種材料,兵馬未動(dòng),糧草先行。
于是得先請(qǐng)教一下師兄師姐們:咱們有什么試劑?你們之前是怎么做的?
師姐A:一年多前啦,好像用的是一個(gè)試劑盒。
師姐B:這個(gè)實(shí)驗(yàn)我們也不常做啊,試劑盒內(nèi)的高保真酶可能用完了。
師兄D:那個(gè)Dpn I還有,你再買一管Herculase酶吧
master p:河什么絲,師兄?
師兄D在一張草稿紙上飛速寫下“Herculase”,然后說:喏,河口蕾絲,這是比Pfu還牛B的高保真聚合酶,趕緊買一個(gè)去吧!
幾通電話后,輾轉(zhuǎn)聯(lián)系到了北京一家公司才算購(gòu)買到。Agilent是外國(guó)大牌,整個(gè)天津城都找不到貨——還是帝這樣的一線大城市好哎。

自那以后,Master P再也沒用過那款"河口蕾絲"的酶(主要是沒需求,沒途徑),但是已經(jīng)在定點(diǎn)突變實(shí)驗(yàn)上小有經(jīng)驗(yàn),F(xiàn)在就跟隨小P來了解一下定點(diǎn)突變的原理與方法吧!
體外誘變有多種方法,這篇主要介紹初學(xué)者最容易入門的以環(huán)形質(zhì)粒做模板,并通過Dpn I消化原始模板質(zhì)粒DNA的方法。
                                                               
原理:
(以下藍(lán)色字體引自《分子克隆實(shí)驗(yàn)室指南·第四版》相關(guān)章節(jié))
以雙鏈DNA為模板的體外誘變:用Dpn I選擇突變體
以變性質(zhì)粒DNA作為模板,在高保真聚合酶作用下,使用兩條寡核苷酸鏈引導(dǎo)DNA合成。兩條寡核苷酸鏈內(nèi)均含有預(yù)定突變位點(diǎn),并且兩者在質(zhì)粒DNA上的結(jié)合形成彼此反向互補(bǔ)。在該方案中,經(jīng)過多輪熱循環(huán),雙鏈質(zhì)粒DNA的全長(zhǎng)均以線性形式擴(kuò)增,最終產(chǎn)生一種DNA雙鏈帶交錯(cuò)缺口的突變質(zhì)粒。


圖1  環(huán)形質(zhì)粒法定點(diǎn)突變示意圖
圖片來源于Agilent Quickchange定點(diǎn)突變?cè)噭┖。如圖所示,黃綠所示為作為模板的質(zhì)粒DNA,來源于大腸桿菌;紅藍(lán)所示為經(jīng)過高保真酶擴(kuò)增而得到的具有nick(缺口,DNA鏈的磷酸二酯鍵并未閉合,此類質(zhì)粒應(yīng)歸類于開放式-環(huán)形質(zhì)粒,拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)與閉合環(huán)形質(zhì)粒有差異。通常,普通教科書內(nèi)講述大腸桿菌轉(zhuǎn)化質(zhì)粒的時(shí)候,質(zhì)粒閉合環(huán)形,如從某個(gè)菌株提取的質(zhì)粒,或者經(jīng)過限制酶切后有經(jīng)連接酶(T4 DNA ligase 或者Taq DNA ligase)構(gòu)建而成的質(zhì)粒。非閉合環(huán)形質(zhì)粒同樣也能被大腸桿菌細(xì)胞吸收收,斷裂的nick可在質(zhì)粒進(jìn)入感受態(tài)細(xì)胞內(nèi)后被修補(bǔ)。
因?yàn)閿U(kuò)增反應(yīng)使用一定量的模板DNA,野生型質(zhì)粒DNA的轉(zhuǎn)化子背景將非常高,因此需要增加富集突變體DNA的步驟。該方案通過采用可以特異性消化完全甲基化(5′-Gm6ATC-3′,Vovis and Lacks 1977)的限制酶Dpn I處理線性擴(kuò)增產(chǎn)物來實(shí)現(xiàn)這一目標(biāo)。Dpn I可以消化擴(kuò)增反應(yīng)體系中的來自大腸桿菌的模板DNA,對(duì)于擴(kuò)增產(chǎn)生的DNA則不能消化。未被消化的突變開環(huán)質(zhì)粒DNA可通過轉(zhuǎn)化并篩選帶有抗生素抗性的大腸桿菌,最終獲得的是還有預(yù)突變位點(diǎn)的完整的突變體質(zhì)粒(在大腸桿菌內(nèi)復(fù)制,提取質(zhì)粒獲得)。根據(jù)誘變體的復(fù)雜程度和模板長(zhǎng)度不同,最終將有15-80%的轉(zhuǎn)化子含有所需要突變的質(zhì)粒(Weiner,1994)
該方法成功的關(guān)鍵在于引物的設(shè)計(jì)和選擇恰當(dāng)?shù)臒岱(wěn)定DNA聚合酶,這在該方案的討論部分會(huì)有進(jìn)一步的論述。
                                                               
實(shí)驗(yàn)流程:
將1-10ug質(zhì)粒DNA溶于40ul H2O中,再加入10 ul 1M NaOH/1mM ETDA溶液。37℃孵育15 min 變性質(zhì)粒模板。
加入 5 ul 3 M NaAC,pH4.8.再加入150 ul預(yù)冷的乙醇沉淀DNA.
4℃ 離心10min 收集變性的質(zhì)粒DNA。小心棄去乙醇上清。再次乙醇沉淀,之后重新懸浮DNA于 20 ul水中。
配置一下體系
10× Reaction Buffer            5 ul
模板質(zhì)粒DNA                       5-50ng
Forward Primer(20 mM)       2.5 ul
Reverse Primer (20 mM)      2.5 ul
dNTP                                    2.5 ul
Pfu                                       2.5 U
補(bǔ)水至                                  50 ul
5.    上PCR儀進(jìn)行反應(yīng)。單堿基置換:12個(gè)循環(huán),一個(gè)氨基酸置換:16個(gè)循環(huán),插入或者缺失:18個(gè)循環(huán)。
6.    擴(kuò)增完成后電泳檢測(cè)。
7.    直接加入10 U Dpn I到5反應(yīng)擴(kuò)增產(chǎn)物內(nèi),37℃ 反應(yīng)1h.
8.    轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)。
9.    挑去數(shù)個(gè)菌落,培養(yǎng)管培養(yǎng)提取質(zhì)粒,質(zhì)粒送一代測(cè)序,或者PCR擴(kuò)增送產(chǎn)物測(cè)序。
備注:以上為實(shí)驗(yàn)的大致步驟。MasterP根據(jù)相關(guān)實(shí)驗(yàn)內(nèi)容進(jìn)行一定幅度的簡(jiǎn)化描述。但保留必要的步驟,仍可以作為實(shí)驗(yàn)參考。
關(guān)于1-3步驟:理論上,在質(zhì)粒DNA 用作PCR模板前不需要變性。如果省略堿變性步驟,超螺旋的天然雙鏈DNA也可以在PCR過程的加熱至94℃而變性。
堿變性的好處是:質(zhì)粒DNA在堿溶液中持續(xù)變性后會(huì)形成特定的狀態(tài),這種形式的質(zhì)粒DNA可以作為模板,但是沒有再次轉(zhuǎn)化細(xì)菌的能力。因此,包含非變異的野生型DNA克隆的背景將明顯減少(Du et al,1995;Dorrell et al,1996)相對(duì)應(yīng)地,在聚合酶鏈反應(yīng)的變性步驟可打亂堿基配對(duì),但并不會(huì)破壞質(zhì)粒分子轉(zhuǎn)化的能力,因此轉(zhuǎn)化后的克隆含有比例較高的非變異的親本質(zhì)粒分子。在實(shí)驗(yàn)的最后階段,當(dāng)需要從克隆中篩選出含有突變的DNA時(shí),堿變性的優(yōu)勢(shì)便會(huì)體現(xiàn)出來。
如果誘變效率低且所選的Dpn I無效,含有野生型分子的克隆比例可能會(huì)異常高。
關(guān)于10× Reaction Buffer:因?yàn)橐獢U(kuò)增一個(gè)完整的質(zhì)粒,長(zhǎng)度要比一般的PCR擴(kuò)增要長(zhǎng),這要求反應(yīng)緩沖液要適應(yīng)長(zhǎng)片段擴(kuò)增,pH要高于普通PCR所用Buffer。
關(guān)于高保真DNA聚合酶:Pfu的保真度足夠,但如今市面上有更好,擴(kuò)增更快速的高保真DNA聚合酶可用。如果是購(gòu)買了定點(diǎn)突變?cè)噭┖,使用配套的聚合酶就足夠了?br /> 關(guān)于PCR循環(huán)次數(shù):所有實(shí)驗(yàn)盡量不超過20個(gè)循環(huán),這是為了保持較低的拷貝數(shù),同時(shí),PCR的后期(20個(gè)循環(huán)以后的循環(huán)內(nèi))更容易產(chǎn)生突變,較少的循環(huán)數(shù)也有利于保真度,出現(xiàn)非預(yù)設(shè)突變的概率也較低。
關(guān)于誘變效率低的實(shí)驗(yàn)應(yīng)用:在步驟7前,需要對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行酚氯仿抽提,乙醇沉淀。但是如今一般實(shí)驗(yàn)室較少使用酚氯仿這類試劑,實(shí)驗(yàn)室使用商品化的PCR產(chǎn)物純化試劑盒也能完成這一步的產(chǎn)物純化工作。隨后,進(jìn)行磷酸化,再用連接酶處理。這樣的操作是將帶nick的開環(huán)質(zhì)粒在分子內(nèi)而不是分子間環(huán)化,更有利于大腸桿菌轉(zhuǎn)化。
關(guān)于最終測(cè)序驗(yàn)證:測(cè)序驗(yàn)證不可少,這一步?jīng)]必要為節(jié)約測(cè)序費(fèi)用而省略。以Master P個(gè)人經(jīng)驗(yàn),挑去3-5個(gè)菌落,培養(yǎng)后提取質(zhì)粒,測(cè)序就足夠挑到含目的突變點(diǎn)的突變質(zhì)粒了。
                                                              
實(shí)驗(yàn)材料準(zhǔn)備:
一般分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室,大多能夠完成PCR/電泳/膠回收/轉(zhuǎn)化/細(xì)菌培養(yǎng),所以對(duì)常規(guī)試劑與儀器將不再列表。
對(duì)于有錢的土豪,Master P自然要列出Bigger Than Bigger的試劑,全是大牌進(jìn)口:如Agilent 公司的Quickchange Site-Directed Mutagenesis Kit,New England Biolabs公司的Q5 Site-Directed Mutagenesis Kit,ThermoFisher公司的Phusion Site-Directed Mutagenesis Kit或者GeneArt Site-Directed Mutagenesis System等。這些試劑盒無疑都是比較優(yōu)秀的產(chǎn)品,使用起來方便,所需試劑如dNTP,Dpn I,感受態(tài)細(xì)胞,甚至SOC培養(yǎng)基都配備齊全。如下圖中QuickChange試劑盒的物品清單,便可見Master P所言不假。

圖2  QuickChange 突變?cè)噭┖薪M分清單(取自對(duì)應(yīng)產(chǎn)品說明書)

在此,Master P給出實(shí)驗(yàn)所需的高低配置,是不是很像組裝電腦配置單?
土豪至尊版配置是這樣的:


中產(chǎn)舒適版配置是這樣的:


小康宜家版配置是這樣的:


溫飽掙扎(大神)版配置是這樣的:


關(guān)于各個(gè)版本說明:
Master P發(fā)現(xiàn),任何行業(yè)都存在省力氣(時(shí)間)費(fèi)錢這么個(gè)道理:比如點(diǎn)外賣比自己做飯貴,打車比步行去某地要貴,在網(wǎng)上花錢購(gòu)買資料貴比辛苦搜尋貴。可見時(shí)間就是金錢。人的財(cái)富是我們的時(shí)間和勞動(dòng)力,再次印證了亞當(dāng)斯密誠(chéng)不欺我也!
使用試劑盒來完成實(shí)驗(yàn)固然輕松,但是也有其弊端。在Master P還是學(xué)生時(shí)期,就不太明白簡(jiǎn)單如質(zhì)粒提取試劑盒內(nèi)各個(gè)成分的作用,只知按照說明書無腦一頓操作就能提取到自己想要的質(zhì)粒。這弱化學(xué)習(xí)實(shí)驗(yàn)原理的動(dòng)力與機(jī)會(huì)。
窮人的孩子早當(dāng)家,沒錢的實(shí)驗(yàn)室,做實(shí)驗(yàn)只能更多的DIY了:試劑都由自己純手共打造。
那么,為什么定點(diǎn)突變的乞丐(大神)僅僅用一個(gè)高保真DNA聚合酶,而不用Dpn I也能完成呢?
原因就在Dpn I只是一個(gè)控制原始質(zhì)粒的手段,而非必不可少。
關(guān)鍵點(diǎn)在控制量:一是使用模板的量,雖然5ng的質(zhì)粒DNA是一個(gè)理想的模板濃度,但是低至0.1ng的模板DNA也是可以擴(kuò)增出來的;這就弱化了Dpn I消化的必要性。二是可以犧牲一點(diǎn)點(diǎn)保真度的考量,增加幾個(gè)循環(huán)以使擴(kuò)增產(chǎn)物相對(duì)模板量比例更高一點(diǎn)。三是可以挑取5個(gè)轉(zhuǎn)化子,按照概率算,只要前兩步關(guān)鍵點(diǎn)控制好,肯定得到至少一個(gè)正確突變點(diǎn)。這就足夠了,誰(shuí)讓我們窮吶!
當(dāng)然,如果不嫌麻煩,提前對(duì)模板做個(gè)堿變性,也是能提高效率,降低背景的。
                                                               
引物設(shè)計(jì)原則
一對(duì)寡核苷酸引物:
必須能與同一目標(biāo)序列互補(bǔ)
長(zhǎng)度必須相等(在25-45個(gè)堿基之間);計(jì)算出的解鏈溫度為78℃或更高。Tm應(yīng)足夠高以防止錯(cuò)配,并且足夠低以便允許引物-引物二聚體在擴(kuò)增反應(yīng)的變性步驟解開。
應(yīng)終止在一個(gè)G或者C殘基
不需要磷酸化。
通常未經(jīng)純化便可使用。然而,如果使用快速液相色譜(FPLC)或聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)純化獲得引物進(jìn)行突變,尤其是產(chǎn)生插入和缺失突變時(shí),效率會(huì)更高。
當(dāng)引入點(diǎn)突變時(shí),一個(gè)引物帶有野生型序列,而另一條引物含有所需的突變,并且在突變位置的兩側(cè)都至少含有12個(gè)堿基的正確序列。如果產(chǎn)生缺失突變,兩個(gè)引物都含有野生型序列,但它們的間距在模板上的距離與缺失片段的長(zhǎng)度相關(guān)。產(chǎn)生插入突變的話,需要一個(gè)引物包含的野生型序列而另一個(gè)引物的5`端含有需要插入片段的序列。
這段關(guān)于分子克隆四版關(guān)于引物設(shè)計(jì)的原封抄寫,個(gè)人感覺有一半含混不清。不知道美國(guó)作者的錯(cuò),還是軍科院研究生翻譯水平的偏差?話說整體來看,第四版中文版錯(cuò)誤的地方還真不少,很多翻譯的原因,難道真如Master P的導(dǎo)師所針砭的,90年代的研究生,00年代的研究生和10年代的研究生,一代不如一代?

不能太教條,盡信書不如無書,即使是分子生物學(xué)中的Bible級(jí)別的工具書。事實(shí)上,任何人也都不可能在所有方面成為專家。且不說一代不如一代這樣的問題,現(xiàn)在讀研的學(xué)生越來越多,大有“人均研究生”的趨勢(shì),那么治學(xué)嚴(yán)謹(jǐn)?shù)难芯可急壤,究竟是低了?br /> 即便是Agilent公司,也沒有徹底修改自己的引物設(shè)計(jì)原則。Lei Zheng等(2004)報(bào)道了一種部分重疊的突變引物設(shè)計(jì)原則,效果不錯(cuò)。QuickChange有一版說明書引用了這篇,但是仍沒有作為主流方法。


圖3 Partial Overlapping 引物設(shè)計(jì)方法示意圖
與標(biāo)準(zhǔn)QuickChange 設(shè)計(jì)方法相比,兩對(duì)引物非完全互補(bǔ)的Partial Overlapping設(shè)計(jì)方法有以下幾個(gè)好處:
Tm不再是不得不考慮的因素,更廣泛的堿基序列可被用到序列設(shè)計(jì)區(qū)域
可以跨越更寬的序列區(qū)域。
突變位點(diǎn)可離5`端4bp,離3`端6-8bp,而標(biāo)準(zhǔn)QC設(shè)計(jì)是要放在離兩端10-15bp的中間。
一條引物可包含更多突變堿基,最高達(dá)17.5%的突變堿基占比,這一特點(diǎn)對(duì)需要考慮中性突變的應(yīng)用更加有用。
Overlapping設(shè)計(jì)的一些原則:
3`端非重疊區(qū)域包含至少8bp
目標(biāo)突變點(diǎn)序列應(yīng)包含在上下游序列內(nèi),中性突變應(yīng)至少包含在一條引物內(nèi)。
引物末端至少1個(gè)G或者C堿基。
也許,從善如流真的很難做到。有需求的可以下載此篇看看,NAR的文章基本都是免費(fèi)的。

圖4     Lei Zheng關(guān)于定點(diǎn)突變的文獻(xiàn)
                                                                 
聚合酶酶選擇:
應(yīng)滿足三個(gè)基本需求:1.校對(duì)活性高;2.堿基錯(cuò)配率低;3.缺乏非模板末端轉(zhuǎn)移酶活性
MasterP發(fā)現(xiàn),中文的《分子克隆實(shí)驗(yàn)室指南》確實(shí)不能深究,以上3個(gè)特點(diǎn)讓人迷惑,校對(duì)活性是保真度所依賴的活性,而保真度高自然錯(cuò)配率低,所以1和2嚴(yán)格來說就是一個(gè)特點(diǎn)呀!第三點(diǎn)就是不依賴模板的末端轉(zhuǎn)移酶(Terminal transferase,TdT)活性,翻譯為“非模板末端轉(zhuǎn)移酶活性”是不妥的,這個(gè)研究生應(yīng)該出來挨打。當(dāng)然還有別的例子,翻譯人員理解程度,或者嚴(yán)謹(jǐn)性決定了翻譯質(zhì)量。
MasterP一言以蔽之:不要用Taq DNA聚合酶,選一個(gè)能擴(kuò)增長(zhǎng)片段的高保真DNA聚合酶就完事了!
                                                               
引物設(shè)計(jì)實(shí)例:
需要定點(diǎn)突變的實(shí)驗(yàn),大多數(shù)是氨基酸定點(diǎn)突變,還有一些是基因調(diào)控序列(UP element,啟動(dòng)子序列,或者轉(zhuǎn)錄起始區(qū)域)的突變研究。
盡管生物學(xué)發(fā)展到9102年了,但是蛋白質(zhì)單點(diǎn)氨基酸突變還是研究某個(gè)點(diǎn)對(duì)蛋白質(zhì)整體折疊與穩(wěn)定性或活性關(guān)鍵位點(diǎn)的有用方法,即使知道了野生型酶的三維結(jié)構(gòu),仍無法準(zhǔn)確回答某位點(diǎn)的改變對(duì)酶整體的影響變化。
一個(gè)突出的典型的例子是Tabor和Richardson(1990)對(duì)T7 DNA聚合酶活性位點(diǎn)的研究,這一成果帶來了用于熱循環(huán)測(cè)序所用的Taq DNA聚合酶開發(fā)。
下面Master P將列出兩張圖以揭示兩種不同引物設(shè)計(jì)的直觀差別

圖5 經(jīng)典的QuickChange定點(diǎn)突變引物設(shè)計(jì)

圖6 Overlapping定點(diǎn)突變引物設(shè)計(jì)
個(gè)人傾向于第二種設(shè)計(jì)方式,因?yàn)樯舷掠我锊粫?huì)完全互補(bǔ),退火受到影響更小,如果感興趣可以結(jié)合引物設(shè)計(jì)的基本理論在腦海里模擬這個(gè)退火延伸的過程。
                                                                 
以上是關(guān)于以環(huán)形質(zhì)粒做定點(diǎn)突變方法的主要內(nèi)容。希望能給初學(xué)者帶來指導(dǎo)性的方法,也希望能為行業(yè)老兵帶來新的思考角度?上(gè)人訂閱號(hào)關(guān)注者還太少,離可開通評(píng)論功能還差的有點(diǎn)遠(yuǎn)。Master P還會(huì)努力的。
2019-4-29
                                                               
利益沖突聲明
Master P就職于北京某生物科技公司研發(fā)崗。本文涉及的產(chǎn)品及相關(guān)評(píng)價(jià)均來自參考資料或本人實(shí)際經(jīng)驗(yàn)總結(jié),如涉及侵權(quán)請(qǐng)聯(lián)系刪除,本人不對(duì)以上所有產(chǎn)品或服務(wù)作任何目的性、傾向性引導(dǎo),因此,Master P不對(duì)以上產(chǎn)品或服務(wù)的實(shí)際使用效果承擔(dān)任何責(zé)任!
2019-4-29
                                                                 
參考文獻(xiàn)
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6. QuikChangeII Site-Directed Mutagenesis Kit Instruction manual,Version E.0,Agilent
7.Lei Z,et al. An efficient one-step site-directed and site-saturation mutagenesisprotocol.Nucleic Acid Research,2004,32:e115

https://mp.weixin.qq.com/s?__biz=MzU3MzkwMDkzNw==&mid=2247483670&idx=1&sn=0c41f53854060efa0161dca05a6f55bb&chksm=fd3bd0f0ca4c59e6dfec34fe31a776cf775f3959ab29e58ab5b6f503b8bad82d2783d7889e91&token=73890196&lang=zh_CN#rd
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21樓2019-10-11 10:30:43
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2019-05-21 00:37   回復(fù)  
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Qifang_qi7樓
2019-05-21 08:49   回復(fù)  
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